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Aug 31, 2023

Estrutura, catálise, transporte de quitina e inibição seletiva da quitina sintase

Nature Communications volume 14, número do artigo: 4776 (2023) Citar este artigo

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A quitina é um dos biopolímeros naturais mais abundantes e serve como um componente estrutural crítico de matrizes extracelulares, incluindo paredes celulares de fungos e exoesqueletos de insetos. Como um polímero linear de N-acetilglucosamina ligada a β-(1,4), a quitina é sintetizada pelas quitina sintases, que são reconhecidas como alvos para medicamentos antifúngicos e anti-insetos. Neste estudo, determinamos sete estruturas diferentes de microscopia crioeletrônica de uma quitina sintase de Saccharomyces cerevisiae na ausência e presença de doadores de glicosil, aceitadores, produtos ou inibidores de peptidil nucleosídeo. Combinadas com análises funcionais, essas estruturas mostram como os substratos doadores e aceitadores se ligam ao sítio ativo, como a hidrólise do substrato impulsiona a auto-escorvamento, como um canal transmembrana condutor de quitina se abre e como os inibidores de peptidil nucleosídeo inibem a quitina sintase. Nosso trabalho fornece uma base estrutural para a compreensão da função e inibição da quitina sintase.

A quitina é o segundo polissacarídeo natural mais abundante na Terra, depois da celulose, e cerca de 100 mil milhões de toneladas de quitina são produzidas por organismos vivos todos os anos1. A quitina é um componente primário das paredes celulares dos fungos, dos exoesqueletos de crustáceos e insetos, e desempenha um papel essencial na reprodução, crescimento ou desenvolvimento desses organismos2. A quitina é um polímero de cadeia longa de N-acetilglucosamina ligada a β- (1,4) (GlcNAc) e é sintetizada pela quitina sintase na membrana plasmática . A quitina sintase catalisa a formação de ligações glicosídicas β (1 → 4) na quitina usando GlcNAc ativado por UDP (UDP-GlcNAc) como doador de açúcar e, entretanto, transporta o produto polissacarídeo através da membrana (Fig. 1a).

um esquema de síntese e transporte de quitina por Chs1. b Ensaio UDP-Glo ​​glicosiltransferase in vitro com Chs1 purificado em tampão com (WT) ou sem (noGlcNAc) GlcNAc. O ensaio sob condições WT também foi realizado com EDTA, tripsina, NikkoZ ou PolyB. A reação sem Chs1 foi usada como controle. Os pontos de dados representam a média ± DP em triplicado. Os dados de origem são fornecidos como um arquivo de dados de origem. c Ensaio de síntese de quitina in vitro com Chs1 purificado em tampão com (WT) ou sem (noGlcNAc) GlcNAc. O ensaio sob condições WT também foi realizado com EDTA e tripsina. A reação sem Chs1 foi usada como controle. Os pontos de dados representam a média ± DP em triplicado. Os dados de origem são fornecidos como um arquivo de dados de origem. d Mapa Cryo-EM e modelo atômico do dímero apo Chs1. e Representação em desenho animado do monômero Chs1. O polipeptídeo é mostrado em arco-íris do terminal N ao C. O suposto sítio ativo é destacado por um círculo laranja. O suposto canal de transporte de quitina é delineado por uma seta roxa. f Topologia de desenho animado do monômero Chs1. g O mapa de domínio Chs1. Os principais domínios e motivos são rotulados. A região N-terminal invisível está em branco.

Em Saccharomyces cerevisiae, a quitina sintase é codificada principalmente por CHS1, CHS2 ou CHS3. O nocaute simultâneo de todos os três genes é letal na levedura5. ScChs1 e ScChs2 pertencem à mesma família da quitina sintase, que contém diferentes números de hélices transmembranares de ScChs36. ScChs1 e ScChs2 são responsáveis ​​pela síntese do septo primário e relacionados à separação celular na citocinese, enquanto ScChs3 é responsável pela formação de quitina no anel do botão e quitina dispersa na parede celular5,7,8,9,10,11. Estudos anteriores indicaram que Chs1 está principalmente na forma de zimogênio e pode ser ativado por proteólise .

A quitina sintase pertence à família da glicosiltransferase 2 invertida contendo dobras GT-A, que também inclui sintases de hialuronano e celulose . Nos últimos anos, foram relatadas estruturas de sintases de hialuronano e celulose, fornecendo informações estruturais sobre seus mecanismos de funcionamento . No entanto, a estrutura da quitina sintase não foi determinada, dificultando uma compreensão mecanicista dos mecanismos catalíticos e de transporte de quitina da quitina sintase.

2000 cells were counted and calculated using w303 and chs1Δ as negative and positive controls. The phenotype of the cell string is an indicator of how much Chs1’s function is disrupted in vivo. d Structural comparison between UDP-GlcNAc donor-bound Chs1 (purple) and primed UDP+GlcNAc-bound Chs1 (cyan) by aligning their TMs. The orange arrow marks the shift of the GT domain and nucleotide toward the membrane from the donor-bound state to the primed state. The active site is highlighted by a blue rectangle. The sugar donor is highlighted by a yellow rectangle. e Close-up view of the active site of primed Chs1 (cyan) in complex with UDP, GlcNAc, and two Mg2+ ions (lime). This is enlargement of the blue rectangle in (d) viewed from left. Substrates and key residues are shown in stick representation. f Enlargement of the yellow rectangle in (d) viewed from back. The UDP (cyan) and Mg2+ (lime) of primed Chs1, and UDP-GlcNAc (purple) and Mg2+ (purple) of the donor-bound Chs1 are shown. α-, β-phosphates are labeled, highlighting a 180° rotation of the β-phosphate from UDP-GlcNAc to UDP./p>4 Å. This is probably partially because the conserved metal coordinate DxD motif in other metal-dependent GT-A fold glycosyltransferases33 is replaced by a DAG motif (residues 602–604) in Chs1 (Fig. 3a, Supplementary Fig. 14). Such architecture of Mg2+ enables the movement of β-phosphate./p>

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